血细胞计数板滴在哪里 血细胞计数板的使用注意事项

创业分享 2024-07-24 09:53:47

生物问题 关于血球计数板

先盖盖玻片,再滴液体。如果先滴液体再盖盖玻片时,由于水的表面张力,容易使得盖玻片滑走。

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血细胞计数板滴在哪里 血细胞计数板的使用注意事项


先盖再在一侧滴,在另一侧用吸水纸吸引,液体就会过去,盖玻片也不会滑走,所以应该先盖再滴

一般是先加盖玻片在滴液,如果你先加液了在加盖玻片可能会影响盖玻片下面的体积。就是液体的高度可能不是0.1mm了。

都可以。

要不要给你写个吃饭指南,规定口先吃饭还是先吃菜呀?为什么先吃饭?为什么先吃菜?

血球计数板为什么先盖上盖玻片? 滴加溶液时通过边缘进入吗》

先盖片再滴在一侧,在用吸水纸吸引的话,会使酵母菌均匀的沉降在计数室内。计数时误会很小。如果是先滴再盖片的话,在盖玻片与培养液接触的同时,使会使酵母菌在计数板的分布改变位置,不均匀分布。计数物产较大。

应该是为了防止气泡 的产生。

简述血球计数板的结构和计数原理?

用优质厚玻璃制成。每块计数板由H形凹槽分为2个同样的计数池。计数池两侧各有一支持柱,将特制的专用盖玻片覆盖其上,形成高0.10mm的计数池。在血球计数板上,刻有一些符号和数字,XB-K-25为计数板的型号和规格,表示此计数板分25个中格。

计数原理:在血球计数板上,刻有一些符号和数字,XB-K-25为计数板的型号和规格,表示此计数板分25个中格。

计数区边长为1mm,则计数区的面积为1mm,每个小方格的面积为1/400mm。盖上盖玻片后,计数区的高度为0.1mm,所以每个计数区的体积为0.1mm,每个小方格的体积为1/4000mm。

扩展资料

误控制:

血细胞计数的误分别来源于技术误和固有误。其中由于作人员采血不顺利,器材处理、使用不当,稀释不准确,细胞识别错误等因素所造成的误属技术误;而由于仪器(计数板、盖片、吸管等)不够准确与精密带来的误称仪器误,

由于细胞分布不均匀等因素带来的细胞计数误属于分布误或计数域误(filederror)。仪器误和分布误统称为固有误或系统误。技术误和仪器误可通过规范作、提高熟练程度和校正仪器而避免或纠正,但细胞分布误却难于消除。

参考资料来源:

血球计数板怎么向里面加液?

血球计数板的使用

以计数酵母菌为例

(1)用血球计数板计数酵母菌悬液的酵母菌个数.

(2)样品稀释的目的是便于酵母菌悬液的计数,以每小方格内含有4-5个酵母细胞为宜,一般稀释10倍即可.

(3)将血球计数板用擦镜纸擦净,在的计数室上加盖专用的厚玻片.

(4)将稀释后的酵母菌悬液,用吸管吸取一滴置于盖玻片的边缘,使菌液缓缓渗入,多余的菌液用吸水纸吸取,捎待片刻,使酵母菌全部沉降到血球计数室内.

急!!关于血球计数板和细菌计数的问题

血球计数法是不能使用油镜的。因为血球 计数法要使用盖玻片,盖上盖玻片可以确保计数室的高度是0.1mm(这个在你的血球计数板的左上角有标注)。在计数时,还要确保把计数室处于液体不同深度的微生物全部计入。不论是盖玻片厚度还是计数室的高度,都超过了油镜的工作距离(一般也就是在0.1mm左右)。

所以,用血球计数法,应使用高倍镜观察。对于较大的细胞,如血细胞(名字来由)、酵母细胞,计数没有问题。对于一般的细菌而言,由于个体太小,在高倍镜下看不清,不适合用该方法。

1、这两种计数板的样子不多,你的照片是血球计数板,主要是盖玻片下面的液体厚度为0.1mm,比较厚,不适用于细菌计数,细菌比血球小得多,细菌在这么厚的液体中会有几层,上层的能看到,下层的就看不到了;好像细菌计数板是0.02mm,反正比0.1薄。

2、你的血球计数板上没小格的面积是1/400平方毫米,10平方毫米就是4000个小格。不要用这种板子计数细菌了,不准。

3、稀释平板涂布法:菌液稀释后涂布平板,培养,数菌落数。定量PCR:提取DNA,定量。

我这两天正用这个东西做菌的计数,画菌的生长曲线,我的理解就是怎么用这个能计出数来就行是吧?

细菌计数板,我前两天听一教微生物的老师说过,国外有这个东西,但国内暂未见到。我用的就是上图的这个。

你用10倍镜观察,就会发现25个中格,每个中格里有16个小格和16个中格,每个中格里有25个小格的意思了。菌计数的时候,16个中格,只要查四个角上的中格里菌数,然后按公式计算就行了。如果是25个中格,那就四个角的中格加上正中间的中格中菌数,然后按公式计算就行了。

只要理解了2516和1625,公式自然就明白了,就自然会用了。

1.数红细胞用专用板,就是你上的版,不能用油镜,油镜是看细菌用的,看细菌用一张载玻片就行了,但是要烤干染色

2.细胞数<200个/10mm2或>500个/10 mm2 时,属于异常临床结果了吧。不知道你要计数的是红细胞还是白细胞, 数的格子不一样的。白细胞数4角大方格,红细胞数大方格的25个中方格,每个中方格又有16个小方格。

3.还是自己百度的,我也不知道你想问什么

血细胞怎么做计数实验?

实验

目的原理 了解血细胞计数的原理并掌握红细胞、白细胞、血小板计数的方法,红细胞计数结果结合血红蛋白值还可以计算出红细胞平均血红蛋白量(MCH)可作为生理机能检查和临床诊断的指标。用相应的稀释液将血液稀释若干倍(另有抗凝、固定、着色作用),置于计数室中,在显微镜下计数一定容积内的血细胞数。 稀释血液有血细胞吸管法和法,本实验采用后者。

实验对象与用品 鸡或家兔。血细胞计数板、专用盖玻片、吸血管、显微镜、手揿计数机、血细胞稀释液、拭镜纸、毛笔。

方法步骤

(一)熟悉计数室

血细胞计数板系一长方形厚玻片,常用的改良牛氏(Improved-Neubauer) 计数板在横沟的两边各有一计数室,两计数室结构完全相同。计数室较两边的盖玻片支柱低0.1毫米。因此,放上盖玻片时,计数板与其间距即计数室空间的高为0.1毫米(图8-1)。在低倍显微镜下可见计数室被双线划分成9个边长为1毫米的大方格。四角的大方格又各分为16个中方格,这是用来计数白细胞的。大方格被划分为25个中方格,每一中方格又划分成16个小方格(图8-2称25×16,也有的计数板为16×25的,小方格面积一致)。大方格的四角及中心5个中方格(16×25者则为四角上的中方格)为红细胞或血小板计数范围。

(二)红细胞计数

先用稀释法制备禽类血细胞悬液:将禽类红细胞稀释液Ⅰ、Ⅱ分别置水浴锅中预热到41~42℃,取Ⅰ液1mL于中,用吸血管加入新鲜鸡血(或肝素抗凝血)20霯,再加入Ⅱ液1mL混匀,置该水浴锅中保温50s左右,置室温,即为待检的血细胞悬液。可用于充液计数。取干洁的计数板,置于水平的显微镜载物台上,盖上盖玻片,使两侧各空出少许。摇匀血细胞悬液,用滴管吸取,将滴管尖轻轻置于盖玻片边缘外,让滴出的血细胞悬液凭毛细管作用吸入计数室内,刚好充满计数室为宜(图8-3)。静置2min后计数,先用低倍镜观察,不均匀则抛弃。计数时用虹彩、集光器、反光镜等调节入射光角度和强度,认清 计数室位置。采用“由上至下,由左至右,顺序如弓”的顺序,对压边线细胞采取“数上不数下,数左不数右”的原则(图8~4)。依次计数并记录5个中方格中分别有多少个红细胞。

(三)血小板计数

采取血液并立即与抗凝剂混合(由于血小板具有趋向于凝集和粘附于异物表面的特性)。以血小板稀释液(10%EDTANa2 10mL与0.8%NaCl90mL组成)将血液稀释200倍,混匀后滴入血细胞计数室内,静置15min,待血小板下沉后。于高倍镜下计数(同红细胞 计数)。在高倍镜下血小板呈椭圆形、圆形或不规则的折光小体分布于红细胞间,注意与杂质相区别。也可用复方尿素稀释液稀释血液,应静置20min以上,待红细胞充分溶解后再充液计数。

(四)计算

按计数室构造及血液稀释倍数,将血细胞计数结果换算成每立方毫米中血细胞的个数。以每100mL血液中的血红蛋白量(g)乘以10再除以红细胞数(106/mm3)得红细胞平均血红蛋白量(MCN,单位μμg)。

(五)仪器洗涤

计数板、盖玻片和测定管用清水冲洗,再用绸布或细布沾干。

要求与思考题

1.计算结果,报告中简要说明计算过程。求出本组同学测定的均值并评价之。

2.了解各类稀释液成分,分析各物质的作用。

注意事项

1.充液前应充分混匀血细胞悬液,充液要连续、适量,充液后应待血细胞下沉后再计

数。

2.计数板、盖玻片、吸血管及测定管等用过后必须立即按要求洗涤干净。

组织建议 将相同类型的计数板集中在一个组内,便于指导。本实验属于基本作,各位朋友均应作得出结果。

附注:

1.本法可同时计数禽类白细胞数,计算方法也类似。

2.禽类血细胞稀释液为:

Ⅰ液

中性红 25.0mg

NaCl 0.9g

加蒸馏水至100.0mL

Ⅱ液

结晶紫 12.0mg

柠檬酸钠 3.8g

0.8mL

加蒸馏水至100.0mL

3.哺乳类红细胞稀释液可用生理盐水或阿扬(Hayem)氏液(NaCl 1g,Na2SO4·10H2O 5g,HgCl2 0.5,加蒸馏水至200mL过滤)。白细胞稀释液成分为冰醋酸0.1mL,1%龙胆紫1mL加蒸馏水至100mL,或直接用2%。

4.血小板复方尿素稀释液配方为:尿素10g,柠檬酸钠0.5g,甲醛0.1mL,加蒸馏水到100mL,混合,待完全溶解后过滤。置冰箱内可保存1~2周。

赞同一楼朋友的意见!

血球计数板如何使用?

(1)构造:血球计数板是一块特制的载玻片,它的上表面有4条下凹的槽,构成3个平台,中间的平台又被一短横槽隔为两半,每半边各有一个方格网,每个方格网上有9个大小相等的大方格,其中只有中间的一个大方格为计数室,供微生物计数用,这一大方格的长和宽各为1mm,深度为0.1mm,其体积为0.1mm3。

(2)规格:

一种是大方格内分为25中方格,每一中格又分为16小方格;另一种是大方格内分为16中方格,每一中方格又分为25小方格。但是不管计数室是哪一种构造,它们都有一个共同的特点,即每一大方格都是由16×25=25×16=400个小方格组成,见图:

(3)使用方法

①取清洁干燥的血球计数板,加盖玻片盖住网格和两边的槽。

②将待测菌液充分摇匀后,用无菌吸管吸少许,由盖玻片边缘或槽内加入计数板,使其自行渗入计数室内,计数室内不能有气泡。静置5-10分钟。

③在低倍镜下找到小方格网后更换高倍镜观察计数,上下调动细螺旋,以便看到小室内不同深度的菌体。位于分格线上的菌体,只数两条边上的,其余两边不计数。即数上线就不数下线,数左边线就不数右边线。

④计数时,若使用刻度为25中方格×16小方格的计数板,计数四个角的4个中方格,及1个中方格的菌数(即80小方格);若使用刻度为16中方格×25小方格的计数板,就数四个角的4个中方格(即100小方格)内的菌数。每小方格中菌数以5-10个为宜,如菌液过浓可适当稀释。

⑤每个样品重复计数2-3次,取其平均值,按下式计算样品中的菌数。

刻度为25中方格×16小方格的计数板:

刻度为16中方格×25小方格的计数板:

⑥试验结束后要清洗和整理试验用具,特别注意血球计数板不能用刷蘸洗涤剂擦洗,正确的做法是浸泡和冲洗,洗后自行晾干或用吹风机吹干。通过镜检观察每小格内是否残留菌体或其他沉淀物,若不干净,则必须重复清洗直到干净为止。

血小板计数板为什么要先盖再滴

应该先盖玻璃片再加计数悬液,因为盖玻片和计数板之间的凹槽形成的狭缝空间的体积是固定的,加液体时靠虹吸作用将液体吸入.如果反之,则盖玻片可能由于已加入的液滴的表面张力作用使其未能严密的盖到计数板表面上,使计数室内的体积增大,从而使计数结果偏高.

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